Low ladder, Ready-to-use, 50ug
R$574,99
Descrição
Marcador para determinar o tamanho do DNA de fita dupla de 25 a 700 pares de bases.
O ladder consiste em 10 fragmentos lineares de fita dupla. Os fragmentos de 100pb e 300pb estão presentes em intensidade aumentada para permitir fácil identificação.
Todos os fragmentos são quantificados com precisão e misturados durante a produção.
Para carregamento de 5ul, todos os fragmentos, exceto 100bp e 200bp, são de 40 ng. O fragmento de 100 pb e 200 pb é de 100 ng.
O marcador é pré-misturado com corante e está pronto para uso.
Carregamento recomendado
2-5 UL
Concentração
Banda em evidência 100 ng/5ul
Outras bandas 40 ng/5ul
Conteúdo (bp)
25, 50, 75, 100, 150, 200, 300, 400, 500, 700
Disponível por encomenda
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Descrição
O marcador 200 bp é ideal para determinar o tamanho do DNA de fita dupla de 200 a 4.000 pares de bases. O ladder consiste em 12 fragmentos lineares de fita dupla.
O fragmento de 1.000 pb está presente em intensidade aumentada para permitir fácil identificação. Todos os fragmentos são quantificados com precisão e misturados durante a produção. Para carregamento de 5 ul, todos os fragmentos, exceto 1.000 bp, são de 40 ng. O fragmento de 1.000 bp é de 100 ng. Este marcador é pré-misturado com tampão de carregamento azul e está pronto para uso.Carregamento recomendado
2-5 ul / poço
Concentração
Bandas em evidência 100 ng /5ul
Outras bandas 40 ng /5ul
Condição de eletroforese recomendada
8 cm, Gel de Agarose a 1%, 1 × TAE, 7 V / cm, 40min.
Conteúdo (bp)
200, 400, 600, 800, 1.000, 1.200, 1.400, 1.600, 1.800, 2.000, 2.200, 4.000.
Concentração
108 ng /ul
Estável por 3 meses em temperatura ambiente, para armazenamento a longo prazo, armazene a -20 ℃.
-
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Gel Loading Dye (6X)
M9041 (5 x 1ML)Armazenar em temperatura ambiente
Descrição
Gel Loading Dye é um tampão de aplicação 6X concentrado com dois corantes de rastreamento para géis de agarose e de poliacrilamida não denaturante. Incluir EDTA em quelato de magnésio (até 10mM) em reações enzimáticas para parar a reação. Azul de bromofenol e xileno cianol são os corantes padrões para eletroforese.
Conteúdo
10mM Tris-HCl, pH 7.6, 0.03% azul de bromofenol, 0.03% xileno cianol, 60% glicerol, 60mM EDTA
Aplicações
Preparar marcadores de DNA e amostras para aplicação no gel de agarose e poliacrilamida.
Características
Dois corantes para rastreamento da migração do DNA durante a eletroforese.
Sem interferência no DNA durante a exposição à luz UV
EDTA se liga a íons de metais bivalentes e inibe nucleases dependentes de metais.
Ensaio de Controle de Qualidade
Gel Loading Dye (6X) é testado para contaminantes de endonucleases, exonucleases e atividade de RNAse. -
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A RNase A, DNase e livre de protease é uma endoribonuclease que degrada especificamente RNA de fita simples nos resíduos C e U. Ele cliva a ligação fosfodiéster entre a 5′-ribose de um nucleotídeo e o grupo fosfato ligado à 3′-ribose de um nucleotídeo de pirimidina adjacente. O fosfato 2′,3′-cíclico resultante é hidrolisado no fosfato 3′-nucleosídeo correspondente.
Aplicações –Preparação de
DNA plasmidial e genômico
–Remoção de RNA de preparações de proteínas recombinantes.
–Ensaios de proteção de ribonuclease
–Mapeamento de mutações de base única em DNA ou RNAFonte
Pâncreas bovino.Peso Molecular
Monômero de 13,7 kDa.Definição de Unidade de Atividade
Uma unidade da enzima causa um aumento na absorbância de 1,0 a 260 nm quando o RNA de levedura é hidrolisado a 37°C e pH 5,0.
Cinquenta unidades são aproximadamente equivalentes a 1 unidade Kunitz. -
R$346,06Adicionar ao carrinho
Descrição
A digestão de Hind III de DNA lambda produz 8 fragmentos adequados para uso como
padrões de peso molecular para eletroforese em gel de agarose. DNA / Hind Ⅲ é pré-misturado com tampão de carregamento e está pronto para uso.Condição de eletroforese recomendada
8 cm, gel de agarose 0,7%, 1 × TAE, 7 V / cm, 45 min.Conteúdos (bp)
125, 564, 2.027, 2,322, 4,361, 6,557, 9,416, 23,130.Armazenar
Estável por 3 meses em temperatura ambiente, para armazenamento a longo prazo, armazene a -20 ℃.Atenção!
As extremidades coesivas dos fragmentos 1 e 4 podem causar a formação de banda extra de 27491 bp. Os fragmentos podem ser separados por aquecimento a 65 ° C por 3 minutos antes de carregar a amostra no gel.