Estabilidade/Armazenamento: Para armazenamento prolongado em solução, por até seis meses, dilua o NUCSI a ≥ 6000 u/ml em água e congele em alíquotas. As soluções diluídas podem ser estabilizadas adicionando 0,1% de albumina (Código Worthington: BSANF) e 10% de glicerol.
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Uma unidade hidrolisa um micrograma de DNA desnaturado de timo de bezerro por minuto a 37°C, pH 4,6.
Características da Nuclease, S1
Aproximadamente 32.000 – 36.000 daltons, existe como monômero. (Vogt, V. 1973).
4,0 – 4,6. (Vogt 1973 e Ando 1966).
Zn ++ e/ou Ca ++ . (Vogt 1973 e Ando 1966).
EDTA, citrato (Vogt 1973 e Ando 1966) e uma alta concentração de SDS.
Conservar a -20°C.
Ensaio de nuclease S1
Tampão: 0,2 M NaCl, 0,002 M ZnCl2 , 0,06 M CH3COONa , pH 4,6: dissolver 5,844 g NaCl (PM 58,44), 136 mg ZnCl2 ( PM 136,29) e 1,85 ml de ácido acético glacial concentrado em 450 ml de água destilada de grau reagente. Ajustar o pH para 4,6 com NaOH 10 M. Completar o volume final para 500 ml com água destilada de grau reagente.
Diluente enzimático: dissolver 40 mg de BSA em 200 ml de tampão
Substrato: Triture 60 mg de DNA de timo de bezerro em pequenas fibras e dissolva em 50 ml de água de grau reagente, deixando em temperatura ambiente por pelo menos 18 horas. Pode ser necessária agitação adicional para que a solução se dissolva. Adicione 10 ml da solução de DNA a 10 ml de tampão. Esta é a solução nativa de DNA de timo de bezerro (Substrato B).
Aqueça a solução de DNA restante em um tubo de ensaio Pyrex grande com uma barra de agitação em água fervente, em um aquecedor/agitador, mexendo por 20 minutos. Despeje imediatamente em um béquer de 1 litro PRÉ-CONGELADO em gelo. Misture volumes iguais da solução de DNA e do tampão frio . Esta é uma solução de DNA de timo de bezerro desnaturada pelo calor (Substrato A). Use o mais rápido possível para evitar que o branco se eleve.
Ácido perclórico 15%: adicione 21,5 ml de ácido perclórico concentrado (70%) a 78,5 ml de água deionizada.
- Para limpar tubos de vidro (dois para cada ponto), adicione 2 ml de substrato B para testes. Inclua 2 tubos com 2 ml de substrato B para brancos (sem adição de enzima) e 2 tubos com 2 ml de substrato A (teste de DNA nativo).
- Incube por 5 minutos antes de adicionar a enzima.
- Adicionar 0,1 ml de diluição de enzima
- Incube a 37°C por 10 minutos.
- Pare a reação adicionando 2 ml de ácido perclórico a 15%.
- Deixe no gelo por 10 minutos.
- Centrifugue em uma centrífuga de bancada por 15 minutos a 2000 rpm.
- Retire 3 ml de sobrenadante e leia A260.
Cálculo
unidadesml = UM260Amostra – UM260Embranco x diluição x 1 2 4 2 10
Onde 1242 é um fator derivado da divisão do volume de reação (4,1 ml) pelo A260 de 1 µg (0,033) e da divisão pelo volume da amostra de enzima usada (0,1 ml).
Referências de Nuclease, S1
114 , 158, 1966
Caracterização da atividade da nuclease do tipo S1/feijão mungo em suspensões de células vegetais ,
74 , 107, 1991
6 , 907, 1989
Purificação da nuclease S1 de Aspergillus-Oryzae por reciclagem de focalização isoelétrica ,
11 , 953, 1990